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Cytosolic, Nuclear Protein harvest

NucBuster tm protein Extaction kit

Kit : merckmillipore(cat.71183-3)

 

(NucBuster TM protein Extaction kit 양이 충분한지 확인 실험에 들어간다. 모자라면 주문)

 

Day 1.  Cell seeding 

1.      Cell well 일정한 양을 seeding 안정화

 

Day 2. compounds treat and protein harvest

2.     Media change(MC) (0.1% FBS or OPTI MEM) stabilization compounds 처리

3.     stimulator 처리해 0.5-1H grows media(GM) suction 주고 1PBS wash 준다.

4.     다시 1PBS well 넣어 스크래퍼나 tip 으로 cell 긁어서 모두 tube 담아 5000RPM, 5min, 4  에서 centrifuge

5.     tube안의 supernatant 1ml tip으로 제거해 주고 다시 1PBS wel 남은 cell 긁어서 tube 넣고 5000RPM, 5min, 4  에서 centrifuge

6.     tube안의 supernatant 1ml tip으로 제거해 주고 tube 주변에 남은 supernatant 모두를 제거해 주기 위해 다시 한번 5000RPM, 3min, 4  에서 centrifuge

7.     200λ pipet으로 supernatant 완전히 제거해 주면 pellet 남아있는 것이 보이는데 이것이 원하는 protein 뽑을 있는 material

8.     NucBuster tm protein Extaction kit Reagent1 75λ tube 넣어주고 (stop-> 급속냉각 deep-freezer) voltex 강하게 15s 해준다. 경우에 따라 pellet 완전히 single cell 떨어질 때까지 30s 동안 강하게 voltex 해준다.

9.     Ice 5min 다시 voltex 15s 강하게 1,6000g (?RPM), 5min, 4  에서 centrifuge (centrifuge돌아갈 동안 cyto, Nu tube labeling)

10.   Pellet 그대로 두고 상등액만 cyto tube 옮겨 담는다.

11.   Nuclear 영향을 미칠지 모르는 남아있는 상등액을 모두 제거하기 위해 cold PBS 500λ정도를 넣고 약간 흔들어 1,6000g, 5min, 4  에서 centrifuge

12.   PBS 제거해 주고 다시 잔류하는 PBS제거를 위해 다시 centrifuge ( 중간에 1tube Reagent 2 75λ + 1λ 100Protease inhibitor cocktail, 1λ 100mM DTT tube 수를 계산하여 만들어 둔다.)

13.   supernatant제거 만들어둔 reagent 2 tube 76λ 넣어주고 voltex 강하게 15s 해준다. 경우에 따라 pellet 완전히 single cell 떨어질 때까지 30s 동안 강하게 voltex 해준다.

14.   9, 10번을 반복하여 Nuclear 뽑는다.

15.   tube deep-frezeer 보관한다. –나중에 정량값이 나오면 sheet 실험노트에 붙이고 No.__ tube 적어둔다.

 

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#1. Cell culture

ㄴMethods 2014. 11. 6. 23:51
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생명공학 전공자라면 누구나 접하는 실험방법 중의 하나

누구나 읽으면 이해가 될거라고 스스로 생각하면서 적는 나의 실험방법

디테일을 요구한다면 정중히 거절..ㅋ(구글은 정보의 바다, 궁금한건 구글에서 해답을 찾으시옹~!)

다만 의견수렴 가능 -> 수정해야 할 부분 지적하면 과감히! 판단 후 수정할 의향 120%

(but, 실험실마다 실험 방법이 조금씩, 미세하게, 디테일하게 다르므로 그 다름을 인정해주기 바람)

 

아주 얕은 지식이지만 나눔을 실천하고 싶은 실험실 좀비가...

 

 

 

 

 

Materials and Methods

 

#1. Cell culture 

 

Media (10% FBS in media, welgene), 1 X PBS, pipet, pipet aid, cleanbench,

tip(1000ul, 200ul, 10ul), trypsin(welgene), 15ml tube or 50ml tube(SPL), dish(Nunc)

 

 

1   FBS 와 Media를 thermostat (37도) 에 넣어서 미리 heat (약 20분) 

 

2   Cleanbench ON (UV off, light ON, Fan turn on), 필요한 멸균된 pipet이나 tip등이 충분한지 확인하고 미리 cleanbench안에 넣어둔다

 

3   Cleanbench를 70% EtOH 묻힌 티슈로 잘 닦는다

 

4   주변 정리(FBS, Media 등 화염멸균 후 Cleanbench안에 넣기)

 

5   alcohol lamp에 불 붙이기

 

6   CO2 incubator에서 dish 꺼내어 cell을 현미경으로 관찰

 

7   cell에 이상이 없으면 현미경 스위치를 끈 후 dish를 클린벤치로 가져간다

 

8   포셋을 이용해 tip을 꺼내어 suction기에 끼운 후 dish안에 있는 media suction  

 

9   media가 완전히 suction되면 tip은 빼서 버리고 suction기 전원 off.

 

10   pipet aid 이용해 1X PBS 5ml를 dish 에 넣고(cell이 떨어지지 않도록 가장자리로 PBS를 넣어준다) 골고루 handling 해 준 후 다시 suction (dead cell, serum 등이 남아있지 않도록 wash)

 

11   Dish에 trypsin 0.5ml 고 5% CO2 incubator 2~3min

 

12   cell이 바닥에서 떨어졌는지 현미경으로 확인(2~3분 후)

 

13   1X PBS 10ml 넣고 pipeting으로 cell을 떼어내 준 후 15ml tube에 담는다 

 

14  15ml tube centrifuge 1200RPM, 3min

 

15   centriguge​ 하는 시간 동안 new dish 에 labeling(name, date, cell line name, passage...)

 

16   ​tube가져와서 supernatant throw out, new media 10ml넣고 pipeting

17   ​cell count 

18  ​원하는 양만큼 new dish에 cell seeding

19  ​혹은 실험해야 하는 거라면 원하는 cell 수로 원하는 plate에 cell seeding

 

 

 

 

 

[ 참고 문헌 ]

 

 


세포배양노트

저자
정출이헌 지음
출판사
월드사이언스 | 2001-08-05 출간
카테고리
과학
책소개
초보자를 위한 세포배양 입문서. 배양실 견학에서부터 세포를 제대...
가격비교

 

 

 

cell 실험을 할 땐 항상 라텍스를 끼고 contamination이 되지 않도록 유의하면서 조심스럽게 실험해야한다

물론 cell 을 항상 조심스럽게 다뤄야 하고, culture 할 때 자극을 많이 주지 않는 것이 결과에 영향을 미치지 않는 방법이다.

  

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